\documentclass[aspectratio=1610]{beamer} \usepackage{makecell} \usepackage{etoolbox} \usepackage{biblatex} \usepackage{tikz} \usepackage{bbding} \usepackage{layouts} \usepackage{booktabs} % To thicken table lines %\usepackage[sfdefault]{FiraSans} \usetheme{metropolis} % Use metropolis theme \usetikzlibrary{positioning,shapes,arrows,calc,fit,backgrounds,shapes.multipart} \tikzset{box/.style={draw, rectangle, rounded corners, thick, node distance=7em, text width=6em, text centered, minimum height=3.5em}} \tikzset{line/.style={draw, thick, -latex'}} \tikzset{every node/.style={font=\scriptsize}} %Graphics and Videos % https://tex.stackexchange.com/questions/89088/how-to-embed-video-and-animation-in-latex-and-latex-beamer-step-by-step \usepackage{graphicx} %The mode "LaTeX => PDF" allows the following formats: .jpg .png .pdf .mps \usepackage{animate} %\usepackage[utf8]{inputenc} %\usetheme{Antibes} \usefonttheme{professionalfonts} \setbeamertemplate{itemize items}[circle] %\bibliography{presentation} \newcommand\blfootnote[1]{% \begingroup \renewcommand\thefootnote{}\footnote{{\tiny #1}}% \addtocounter{footnote}{-1}% \endgroup } %Page de titre: \title[Identification de translocations par NGS capture] {Identification de translocations par NGS capture} \author{Dr. Thomas Steimlé} \institute[OH]{ Laboratoire d'oncohématologie de l'hôpital Necker\\ \vfill \begin{figure}[!b] \centering \includegraphics[height=1cm]{Images/1200aphp.pdf}\hspace*{5.5cm}~ \includegraphics[height=1.5cm]{Images/necker.pdf} \end{figure} } \date{Février 2021} %\titlegraphic{\hfill\includegraphics[height=1.5cm]{Images/1200aphp.svg.png}} %\logo{\includegraphics[width=3cm]{Images/1200aphp.svg.png}} \begin{document} \begin{frame} \maketitle \thispagestyle{empty} \end{frame} %\frame{\titlepage} %\logo{} \begin{frame} \frametitle{Sommaire} \setcounter{tocdepth}{1} \tableofcontents \end{frame} \section{Introduction} \begin{frame} \frametitle{Introduction} \begin{itemize} \item \textbf{Rationnel} : les fragments d'ADN capturés peuvent contenir des points de cassures si ils sont à une distance proche des sondes. La séquence de ces fragments étant chimérique, l'alignement sur le génome de référence ne permet pas d'observer les translocations. \item \textbf{Objectifs} : détecter les reads chimériques et identifier les partenaires qui les composent. \item \textbf{Hypothèse} : il existe des translocations impliquant des partenaires inconnus. \item \textbf{Hypothèse alternative} : il existe des insertions de TREC. \end{itemize} \end{frame} \section{LAL-T} \begin{frame} \frametitle{Translocations réciproques équilibrées impliquant \textit{TRD-A}} Les translocations impliquants le locus \textit{TRD-A} sont observées dans \alert{$\approx$ 20 \% des LAL-T}. Avec pour partenaires principaux: \begin{itemize} \item \textit{TLX1} t(10;14)(q24;q11) EFS allongé \item \textit{TAL1} t(1;14)(p33;q11) \item \textit{LMO1} t(11;14)(p15;q11) \item \textit{LMO2} t(11;14)(p13;q11) \end{itemize} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[width=\textwidth]{Images/translocation_10_14.pdf} \end{figure} \end{center} \blfootnote{Bergeron J, et al. Blood. 2007 Oct 1;110(7):2324-30.2007 Jul 3. PMID: 17609427.} \blfootnote{Dik WA, et al. Blood. 2007 Jul 1;110(1):388-92. PMID: 17360939.} \end{frame} \section{Méthode} \begin{frame} \frametitle{Méthode: confection de la bibliothèque} 1) \alert{Fragmentation} mécanique des chromosomes tumoraux en fragements allant de 200 à 900 pb. \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[width=\textwidth]{Images/fragmentation.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Méthode: confection de la bibliothèque} 2) \alert{Sélection} des fragments d'intérêt par sondes magnétiques (rouge) içi les sondes ont été choisies pour être complémentaires des locus \textit{TRDV} \textit{TRDD}. \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[width=\textwidth]{Images/selection.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Méthode: analyse} 3) \alert{Séquençage} (paired-end 2x 150) des fragments puis \alert{alignement} (bwa mem) des reads (R1/R2) sur le génome de référence (hg19). \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[width=\textwidth]{Images/alignement.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Méthode: analyse} 4) \alert{Détection} des positions ou les reads anormaux sont nombreux (SVXplorer), ces reads anormaux sont ensuites isolés (awk).\\ 5) \alert{Assemblage} entre eux des reads anormaux (spades) pour obtenir une \alert{séquence consensus} qui est alignée sur le génome de référence afin d'identifier les partenaires et le point de cassure (bwa mem). \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[width=\textwidth]{Images/assemblage.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \section{Résultats préliminaires} \begin{frame} \frametitle{Comparaison avec la FISH \textit{TRD}} \begin{itemize} \item N = 265 \end{itemize} \begin{center} \begin{tabular}{|l|c|c|}\hline \diaghead{\theadfont Diag ColumnmnHead II}{NGS}{FISH}& \thead{+}&\thead{-}\\ \hline + & 41 & 4 \\ \hline - & 4 & 216 \\ \hline \end{tabular} \end{center} \begin{itemize} \item Sensibilité = 91 $\%$ \item Spécificité = 98 $\%$ \end{itemize} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight]{Images/TRD_all.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire TLX1} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-TLX1.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire LMO2} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-LMO2.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire TAL1} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-TAL1.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire ZFP36L2} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-ZFP36L2.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire ZFP36L2} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/RAG_ZFP36L2.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire ZFP36L2} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/RAG_ZFP36L2_mech.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Alignement sur le neo-chromosome pTer-ZFP36L2-TREC-ZFP36L2-centro} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[height=\textheight-22pt]{Images/RAG_ZFP_TREC_ZFP.pdf} \end{figure} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Recombination signal sequences} \begin{center} \begin{figure} \centering \includegraphics[width=\textwidth]{Images/RSS.pdf} \end{figure} \begin{itemize} \item Très probable \alert{ré-insertion d'une boucle d'excision} du \textit{TRD} (D2-D3). \item Cependant il semble que des translocations homozygotes doivent être éliminées (long-reads). \end{itemize} \end{center} \end{frame} \begin{frame} \frametitle{Caracteristiques des cas} \begin{table} \begin{tabular}[tl]{lccccr} \toprule \textbf{Nom} & \textbf{Clonotype} & \textbf{NOTCH1/FBXW7} & \textbf{ETP} & \textbf{HOXA} & \textbf{Comm} \\ \midrule RAGOT & 2 x $\delta$D2-$\delta$D3 & Q2398* & 0 & 1 & \\ TAHIR & $\delta$D2-$\delta$D3 // GL & P2514fs & 1 & 1 & \\ NEREE & & FBXW7 R465H & “immature” & 0 & \\ 2080178 & $\delta$D2-$\delta$J1 // $\delta$V1-$\delta$J2 & (NRAS) & 0 & 0 & \\ HAOUZI & $\delta$D2-$\delta$J1 // $\delta$V1-$\delta$J2 & P2443fs & 0 & 0 & e1a2 \\ JANOWSKA & & T1602S & & 0 & \\ \bottomrule \end{tabular} \end{table} \begin{itemize} \item Clonotypes compatibles \item Prédominance de mutations \alert{PEST} sur la voie NOTCH1 ($\thickapprox 80\%$) \end{itemize} \end{frame} \begin{frame}[t] \frametitle{ZFP36L2 --- Bibliographie } \begin{columns}[onlytextwidth,T] \column{\dimexpr\linewidth-30mm} \begin{itemize} \item Molécule de liaison aux ARNm (RBP) en 3' UTR. \item Régule l'expression en favorisant la dégradation de certains ARNm (excision de la queue polyA). \item \alert{dKO (L1$^{\textrm{fl}/\textrm{fl}}$L2$^{\textrm{fl}/\textrm{fl}}$ cd2-cre) murin $\rightarrow$ LAL-T}. \item Réduction de l'expression d'icTCR-β dans la pop DN dKO. \item Augmentation de l'expression de \alert{Notch1} relativement à thymus normal et notamment dans la pop DN. \item L'expression de ZFP36L2 serait régulée positivement par Tcf-1. \end{itemize} \column{30mm} \includegraphics[width=40mm]{Images/dko_zfp_surv.png} \end{columns} \blfootnote{Hodson DJ, Janas ML, Galloway A, et al. Deletion of the RNA-binding proteins ZFP36L1 and ZFP36L2 leads to perturbed thymic development and T lymphoblastic leukemia. Nat Immunol. 2010;11(8):717-724} \blfootnote{Wang F, Qi Z, Yao Y, et al. Exploring the stage-specific roles of Tcf-1 in T cell development and malignancy at single-cell resolution. Cell Mol Immunol. 2021;18(3):644-659. doi:10.1038/s41423-020-00527-1} \end{frame} \begin{frame}[t] \frametitle{ZFP36L2 --- Bibliographie} \begin{itemize} \item L'\alert{hyperméthylation} d'un super enhancer de ZFP36L2 est observée dans les cancers squameux de l'oesophage ($\thicksim$1 kb en aval du 3’UTR). \item Des \alert{mutations récurrentes} de type fs ou ponctuelle ont été observées dans les LA. Jurkat = P190L, CEM et PEER = A329V. Ainsi que des délétions. \item Dans LT$_{\textrm{M}}$ liaison aux pre-ARNm notamment de INFg, TNF, Pim1 puis \alert{bloque la formation du complexe ribosomal} et la traduction. Lors de l'activation des LT$_{\textrm{M}}$ cette \alert{inhibition est rapidement levée} et permet une traduction importante. \end{itemize} \blfootnote{Lin, De-Chen et al. “Identification of distinct mutational patterns and new driver genes in oesophageal squamous cell carcinomas and adenocarcinomas.” Gut vol. 67,10 (2018): 1769-1779. doi:10.1136/gutjnl-2017-314607} \blfootnote{Iwanaga E, Nanri T, Mitsuya H, Asou N. Mutation in the RNA binding protein TIS11D/ZFP36L2 is associated with the pathogenesis of acute leukemia. Int J Oncol. 2011;38(1):25-31. } \blfootnote{Salerno F, Engels S, van den Biggelaar M, et al. Translational repression of pre-formed cytokine-encoding mRNA prevents chronic activation of memory T cells. Nat Immunol. 2018;19(8):828-837. doi:10.1038/s41590-018-0155-6} \end{frame} \begin{frame}[standout] Supp \end{frame} \end{document} \begin{frame} \frametitle{Introduction} \begin{figure} \centering \printinunitsof{in}\prntlen{\textwidth} % 5.5129 \printinunitsof{in}\prntlen{\textheight} % 3.55142 % ggsave(".pdf", height = unit(3.55142,"in"), width = unit(5.5129,"in")) \end{figure} \end{frame}