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123456789101112131415161718192021222324252627282930313233343536373839404142434445464748495051525354555657585960616263646566676869707172737475767778798081828384858687888990919293949596979899100101102103104105106107108109110111112113114115116117118119120121122123124125126127128129130131132133134135136137138139140141142143144145146147148149150151152153154155156157158159160161162163164165166167168169170171172173174175176177178179180181182183184185186187188189190191192193194195196197198199200201202203204205206207208209210211212213214215216217218219220221222223224225226227228229230231232233234235236237238239240241242243244245246247248249250251252253254255256257258259260261262263264265266267268269270271272273274275276277278279280281282283284285286287288289290291292293294295296297298299300301302303304305306307308309310311312313314315316317318319320321322323324325326327328329330331332333334335336337338339340341342343344345346347348349350351352353354
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  15. %Graphics and Videos
  16. % https://tex.stackexchange.com/questions/89088/how-to-embed-video-and-animation-in-latex-and-latex-beamer-step-by-step
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  26. \renewcommand\thefootnote{}\footnote{{\tiny #1}}%
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  29. }
  30. %Page de titre:
  31. \title[Identification de translocations par NGS capture]
  32. {Identification de translocations par NGS capture}
  33. \author{Dr. Thomas Steimlé}
  34. \institute[OH]{
  35. Laboratoire d'oncohématologie de l'hôpital Necker\\
  36. \vfill
  37. \begin{figure}[!b]
  38. \centering
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  41. \end{figure}
  42. }
  43. \date{Février 2021}
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  46. \begin{document}
  47. \begin{frame}
  48. \maketitle
  49. \thispagestyle{empty}
  50. \end{frame}
  51. %\frame{\titlepage}
  52. %\logo{}
  53. \begin{frame}
  54. \frametitle{Sommaire}
  55. \setcounter{tocdepth}{1}
  56. \tableofcontents
  57. \end{frame}
  58. \section{Introduction}
  59. \begin{frame}
  60. \frametitle{Introduction}
  61. \begin{itemize}
  62. \item \textbf{Rationnel} : les fragments d'ADN capturés peuvent contenir des points de cassures
  63. si ils sont à une distance proche des sondes. La séquence de ces fragments étant chimérique,
  64. l'alignement sur le génome de référence ne permet pas d'observer les translocations.
  65. \item \textbf{Objectifs} : détecter les reads chimériques et identifier les partenaires qui les composent.
  66. \item \textbf{Hypothèse} : il existe des translocations impliquant des partenaires inconnus.
  67. \item \textbf{Hypothèse alternative} : il existe des insertions de TREC.
  68. \end{itemize}
  69. \end{frame}
  70. \section{LAL-T}
  71. \begin{frame}
  72. \frametitle{Translocations réciproques équilibrées impliquant \textit{TRD-A}}
  73. Les translocations impliquants le locus \textit{TRD-A} sont observées dans \alert{$\approx$ 20 \% des LAL-T}. Avec pour partenaires principaux:
  74. \begin{itemize}
  75. \item \textit{TLX1} t(10;14)(q24;q11) EFS allongé
  76. \item \textit{TAL1} t(1;14)(p33;q11)
  77. \item \textit{LMO1} t(11;14)(p15;q11)
  78. \item \textit{LMO2} t(11;14)(p13;q11)
  79. \end{itemize}
  80. \begin{center}
  81. \begin{figure}
  82. \centering
  83. \includegraphics[width=\textwidth]{Images/translocation_10_14.pdf}
  84. \end{figure}
  85. \end{center}
  86. \blfootnote{Bergeron J, et al. Blood. 2007 Oct 1;110(7):2324-30.2007 Jul 3. PMID: 17609427.}
  87. \blfootnote{Dik WA, et al. Blood. 2007 Jul 1;110(1):388-92. PMID: 17360939.}
  88. \end{frame}
  89. \section{Méthode}
  90. \begin{frame}
  91. \frametitle{Méthode: confection de la bibliothèque}
  92. 1) \alert{Fragmentation} mécanique des chromosomes tumoraux en fragements allant de 200 à 900 pb.
  93. \begin{center}
  94. \begin{figure}
  95. \centering
  96. \includegraphics[width=\textwidth]{Images/fragmentation.pdf}
  97. \end{figure}
  98. \end{center}
  99. \end{frame}
  100. \begin{frame}
  101. \frametitle{Méthode: confection de la bibliothèque}
  102. 2) \alert{Sélection} des fragments d'intérêt par sondes magnétiques (rouge) içi les sondes ont été choisies pour être complémentaires des locus \textit{TRDV} \textit{TRDD}.
  103. \begin{center}
  104. \begin{figure}
  105. \centering
  106. \includegraphics[width=\textwidth]{Images/selection.pdf}
  107. \end{figure}
  108. \end{center}
  109. \end{frame}
  110. \begin{frame}
  111. \frametitle{Méthode: analyse}
  112. 3) \alert{Séquençage} (paired-end 2x 150) des fragments puis \alert{alignement} (bwa mem) des reads (R1/R2) sur le génome de référence (hg19).
  113. \begin{center}
  114. \begin{figure}
  115. \centering
  116. \includegraphics[width=\textwidth]{Images/alignement.pdf}
  117. \end{figure}
  118. \end{center}
  119. \end{frame}
  120. \begin{frame}
  121. \frametitle{Méthode: analyse}
  122. 4) \alert{Détection} des positions ou les reads anormaux sont nombreux (SVXplorer), ces reads anormaux sont ensuites isolés (awk).\\
  123. 5) \alert{Assemblage} entre eux des reads anormaux (spades) pour obtenir une \alert{séquence consensus} qui est alignée sur le génome de référence afin d'identifier les partenaires et le point de cassure (bwa mem).
  124. \begin{center}
  125. \begin{figure}
  126. \centering
  127. \includegraphics[width=\textwidth]{Images/assemblage.pdf}
  128. \end{figure}
  129. \end{center}
  130. \end{frame}
  131. \section{Résultats préliminaires}
  132. \begin{frame}
  133. \frametitle{Comparaison avec la FISH \textit{TRD}}
  134. \begin{itemize}
  135. \item N = 265
  136. \end{itemize}
  137. \begin{center}
  138. \begin{tabular}{|l|c|c|}\hline
  139. \diaghead{\theadfont Diag ColumnmnHead II}{NGS}{FISH}&
  140. \thead{+}&\thead{-}\\
  141. \hline
  142. + & 41 & 4 \\
  143. \hline
  144. - & 4 & 216 \\
  145. \hline
  146. \end{tabular}
  147. \end{center}
  148. \begin{itemize}
  149. \item Sensibilité = 91 $\%$
  150. \item Spécificité = 98 $\%$
  151. \end{itemize}
  152. \end{frame}
  153. \begin{frame}
  154. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD}
  155. \begin{center}
  156. \begin{figure}
  157. \centering
  158. \includegraphics[height=\textheight]{Images/TRD_all.pdf}
  159. \end{figure}
  160. \end{center}
  161. \end{frame}
  162. \begin{frame}
  163. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire TLX1}
  164. \begin{center}
  165. \begin{figure}
  166. \centering
  167. \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-TLX1.pdf}
  168. \end{figure}
  169. \end{center}
  170. \end{frame}
  171. \begin{frame}
  172. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire LMO2}
  173. \begin{center}
  174. \begin{figure}
  175. \centering
  176. \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-LMO2.pdf}
  177. \end{figure}
  178. \end{center}
  179. \end{frame}
  180. \begin{frame}
  181. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire TAL1}
  182. \begin{center}
  183. \begin{figure}
  184. \centering
  185. \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-TAL1.pdf}
  186. \end{figure}
  187. \end{center}
  188. \end{frame}
  189. \begin{frame}
  190. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire ZFP36L2}
  191. \begin{center}
  192. \begin{figure}
  193. \centering
  194. \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/gviz_stacked/TRD-ZFP36L2.pdf}
  195. \end{figure}
  196. \end{center}
  197. \end{frame}
  198. \begin{frame}
  199. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire ZFP36L2}
  200. \begin{center}
  201. \begin{figure}
  202. \centering
  203. \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/RAG_ZFP36L2.pdf}
  204. \end{figure}
  205. \end{center}
  206. \end{frame}
  207. \begin{frame}
  208. \frametitle{Translocations impliquant le locus TRD avec pour partenaire ZFP36L2}
  209. \begin{center}
  210. \begin{figure}
  211. \centering
  212. \includegraphics[height=\textheight-5pt]{Images/RAG_ZFP36L2_mech.pdf}
  213. \end{figure}
  214. \end{center}
  215. \end{frame}
  216. \begin{frame}
  217. \frametitle{Alignement sur le neo-chromosome pTer-ZFP36L2-TREC-ZFP36L2-centro}
  218. \begin{center}
  219. \begin{figure}
  220. \centering
  221. \includegraphics[height=\textheight-22pt]{Images/RAG_ZFP_TREC_ZFP.pdf}
  222. \end{figure}
  223. \end{center}
  224. \end{frame}
  225. \begin{frame}
  226. \frametitle{Recombination signal sequences}
  227. \begin{center}
  228. \begin{figure}
  229. \centering
  230. \includegraphics[width=\textwidth]{Images/RSS.pdf}
  231. \end{figure}
  232. \begin{itemize}
  233. \item Très probable \alert{ré-insertion d'une boucle d'excision} du \textit{TRD} (D2-D3).
  234. \item Cependant il semble que des translocations homozygotes doivent être éliminées (long-reads).
  235. \end{itemize}
  236. \end{center}
  237. \end{frame}
  238. \begin{frame}
  239. \frametitle{Caracteristiques des cas}
  240. \begin{table}
  241. \begin{tabular}[tl]{lccccr}
  242. \toprule
  243. \textbf{Nom} & \textbf{Clonotype} & \textbf{NOTCH1/FBXW7} & \textbf{ETP} & \textbf{HOXA} & \textbf{Comm} \\
  244. \midrule
  245. RAGOT & 2 x $\delta$D2-$\delta$D3 & Q2398* & 0 & 1 & \\
  246. TAHIR & $\delta$D2-$\delta$D3 // GL & P2514fs & 1 & 1 & \\
  247. NEREE & & FBXW7 R465H & “immature” & 0 & \\
  248. 2080178 & $\delta$D2-$\delta$J1 // $\delta$V1-$\delta$J2 & (NRAS) & 0 & 0 & \\
  249. HAOUZI & $\delta$D2-$\delta$J1 // $\delta$V1-$\delta$J2 & P2443fs & 0 & 0 & e1a2 \\
  250. JANOWSKA & & T1602S & & 0 & \\
  251. \bottomrule
  252. \end{tabular}
  253. \end{table}
  254. \begin{itemize}
  255. \item Clonotypes compatibles
  256. \item Prédominance de mutations \alert{PEST} sur la voie NOTCH1 ($\thickapprox 80\%$)
  257. \end{itemize}
  258. \end{frame}
  259. \begin{frame}[t]
  260. \frametitle{ZFP36L2 --- Bibliographie }
  261. \begin{columns}[onlytextwidth,T]
  262. \column{\dimexpr\linewidth-30mm}
  263. \begin{itemize}
  264. \item Molécule de liaison aux ARNm (RBP) en 3' UTR.
  265. \item Régule l'expression en favorisant la dégradation de certains ARNm (excision de la queue polyA).
  266. \item \alert{dKO (L1$^{\textrm{fl}/\textrm{fl}}$L2$^{\textrm{fl}/\textrm{fl}}$ cd2-cre) murin $\rightarrow$ LAL-T}.
  267. \item Réduction de l'expression d'icTCR-β dans la pop DN dKO.
  268. \item Augmentation de l'expression de \alert{Notch1} relativement à thymus normal et notamment dans la pop DN.
  269. \item L'expression de ZFP36L2 serait régulée positivement par Tcf-1.
  270. \end{itemize}
  271. \column{30mm}
  272. \includegraphics[width=40mm]{Images/dko_zfp_surv.png}
  273. \end{columns}
  274. \blfootnote{Hodson DJ, Janas ML, Galloway A, et al. Deletion of the RNA-binding proteins ZFP36L1 and ZFP36L2 leads to perturbed thymic development and T lymphoblastic leukemia. Nat Immunol. 2010;11(8):717-724}
  275. \blfootnote{Wang F, Qi Z, Yao Y, et al. Exploring the stage-specific roles of Tcf-1 in T cell development and malignancy at single-cell resolution. Cell Mol Immunol. 2021;18(3):644-659. doi:10.1038/s41423-020-00527-1}
  276. \end{frame}
  277. \begin{frame}[t]
  278. \frametitle{ZFP36L2 --- Bibliographie}
  279. \begin{itemize}
  280. \item L'\alert{hyperméthylation} d'un super enhancer de ZFP36L2 est observée dans les cancers squameux de l'oesophage ($\thicksim$1 kb en aval du 3’UTR).
  281. \item Des \alert{mutations récurrentes} de type fs ou ponctuelle ont été observées dans les LA. Jurkat = P190L, CEM et PEER = A329V. Ainsi que des délétions.
  282. \item Dans LT$_{\textrm{M}}$ liaison aux pre-ARNm notamment de INFg, TNF, Pim1 puis \alert{bloque la formation du complexe ribosomal} et la traduction. Lors de l'activation des LT$_{\textrm{M}}$ cette \alert{inhibition est rapidement levée} et permet une traduction importante.
  283. \end{itemize}
  284. \blfootnote{Lin, De-Chen et al. “Identification of distinct mutational patterns and new driver genes in oesophageal squamous cell carcinomas and adenocarcinomas.” Gut vol. 67,10 (2018): 1769-1779. doi:10.1136/gutjnl-2017-314607}
  285. \blfootnote{Iwanaga E, Nanri T, Mitsuya H, Asou N. Mutation in the RNA binding protein TIS11D/ZFP36L2 is associated with the pathogenesis of acute leukemia. Int J Oncol. 2011;38(1):25-31. }
  286. \blfootnote{Salerno F, Engels S, van den Biggelaar M, et al. Translational repression of pre-formed cytokine-encoding mRNA prevents chronic activation of memory T cells. Nat Immunol. 2018;19(8):828-837. doi:10.1038/s41590-018-0155-6}
  287. \end{frame}
  288. \begin{frame}[standout]
  289. Supp
  290. \end{frame}
  291. \end{document}
  292. \begin{frame}
  293. \frametitle{Introduction}
  294. \begin{figure}
  295. \centering
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  299. \end{figure}
  300. \end{frame}